تعداد نشریات | 43 |
تعداد شمارهها | 1,639 |
تعداد مقالات | 13,331 |
تعداد مشاهده مقاله | 29,910,974 |
تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 11,962,169 |
جداسازی و شناسایی عوامل پژمردگی فوزاریومی بهلیمو و کنترل بیولوژیکی آن توسط قارچ Trichoderma harzianum در شهرستان خرمآباد | ||
زیست شناسی میکروبی | ||
دوره 12، شماره 47، مهر 1402، صفحه 97-116 اصل مقاله (1.32 M) | ||
نوع مقاله: پژوهشی- فارسی | ||
شناسه دیجیتال (DOI): 10.22108/bjm.2023.138766.1557 | ||
نویسندگان | ||
ارمغان پولادوند؛ مصطفی درویش نیا* ؛ سمیرا پاکباز؛ عیدی بازگیر | ||
گروه گیاهپزشکی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه لرستان، خرمآباد، ایران | ||
چکیده | ||
مقدمه: مهار زیستی از روشهای مؤثر وکارامد در مدیریت بیماریهای گیاهی است که خطر کمتری برای سلامت انسان و محیط زیست دارد. در این پژوهش بهمنظور مهار زیستی بیماری پژمردگی فوزاریومی از قارچ بیوکنترل Trichoderma harzianum استفاده شد. مواد و روشها: بهمنظور بررسی عامل پژمردگی بهلیمو و کنترل بیولوژیکی آن از شهرستان خرمآباد نمونهبرداری شد و تعداد 45 نمونه برای جداسازی و شناسایی به آزمایشگاه منتقل شدند. از جدایة بیوکنترل T. harzianum علیه قارچهای بیمارگر در شرایط آزمایشگاه بهصورت کشت متقابل و تأثیر مواد فرار و در شرایط گلخانه در قالب طرح کاملاً تصادفی و در سه تکرار استفاده شد. نتایج: براساس ویژگیهای مورفولوژیکی و مولکولی جدایههای Fusarium از هم تفکیک شدند و در دو گونة F. oxysporum و F. redolens قرار گرفتند. در آزمایشگاه جدایة T. harzianum از رشد میسلیوم بیمارگرهای F. oxysporum و F. redolens ممانعت کرد؛ اما بیشترین اثر بازدارندگی را بر گونة بیمارگر F. oxysporum داشت و در روشهای کشت متقابل و اثر ترکیبات فرار بهترتیب این بیمارگر را به میزان 5/71 و 5/61 درصد کنترل کرد؛ درحالیکه کنترل F. redolens در دو روش بهمیزان 5/56 و 5/50 درصد بود. نتایج آزمایشهای گلخانهای نشان دادند بیوکنترل T. harzianum علاوه بر افزایش فاکتورهای رشدی گیاه، شاخصهای بیماری را کاهش داد و بیماری را کنترل کرد. تأثیر عامل زیستی T. harzianum بر شدت بیماری F. oxysporum پس از 30 روز برابر با 86/73 درصد و در F. redolens برابر با 16/74 درصد بود. ازنظر فاکتورهای رشدی تیمار T. harzianum، بیشترین و تیمار F. redolens کمترین شاخصهای رشدی را داشتند. بحث و نتیجهگیری: استفاده از عامل بیوکنترل T. harzianum تأثیر معنیداری در جلوگیری از رشد عوامل بیمارگر F. oxysporum و F. redolens دارد؛ بنابراین، بهعنوان یک عامل کاربردی در کنترل زیستی بیماری پژمردگی فوزاریومی برای افزایش بهرهوری و تولید محصول ایمن میتواند استفاده شود. | ||
کلیدواژهها | ||
بهلیمو؛ پژمردگی فوزاریومی؛ کنترل بیولوژیک؛ Trichoderma harzianum | ||
اصل مقاله | ||
مقدمه بهلیمو با نام علمی Lippia citridora Kunth. گیاهی دارویی از خانواده شاهپسندیان (Verbenaceae)، در اصل بومی آمریکای جنوبی است و درختچهای چندساله است که در مناطق گرمسیر همیشهسبز است (1). بیماری پژمردگی فوزاریومی یکی از مهمترین بیماریهای گیاهی در جهان است و موجب کاهش کمیت، کیفیت و ارزش غذایی محصول میشود. علائم بیماری ابتدا در برگهای پایینی و معمولاً بعد از ظهور گل و تشکیل میوه ظاهر میشود. بر اثر فعالیت قارچ خاکزاد گونههای Trichoderma spp. عمدتاً خاکزاد هستند و کنترل زیستی را علیه بیمارگرهای گیاهی بهصورت غیرمستقیم ازطریق رقابت برای مواد غذایی و مکان، تغییر شرایط محیطی یا ارتقای رشد گیاه و مکانیسمهای دفاعی گیاه و آنتی بیوز اعمال میکنند یا بهصورت مستقیم با مکانیسمهایی از قبیل مایکوپارازیتیسم این کار را انجام میدهند (6). در میان گونههایTrichoderma ، گونة T. harzianum بهدلیل رشد سریع، قدرت تکثیر بالا، تحمل به شرایط نامطلوب، توانایی رشد و کلونیشدن در ارتباط با ریشه گیاه و القای رشد گیاه بهطور گسترده استفاده میشود (7). T. harzianum یکی از عوامل بیوکنترل مؤثر بوده است که در زمان حاضر بهصورت تجاری برای کنترل چندین قارچ بیمارگر خاکزاد بهصورت موفق به کار میرود (8). محمد و بنهمو درزمینة مبارزه بیولوژیک با قارچ با توجه به اهمیت گیاه بهلیمو بهعنوان یک گیاه دارویی که سطح زیرکشت حدود 100 هکتار را در استان لرستان و حدود 6 هزار هکتار را در کشور به خود اختصاص داده است و نقش مهمی در صادرات غیرنفتی دارد و عوامل بیماریزا نیز خسارت چشمگیری به این محصول میتوانند وارد کنند، پژوهش حاضر بهمنظور جداسازی و شناسایی عوامل پژمردگی فوزاریومی در بهلیمو و تأثیر عوامل بیوکنترل در جلوگیری از خسارت بیماری انجام گرفت. مواد و روشها جداسازی، خالصسازی و شناسایی نمونهها: در طول پاییز 1400، تعداد 45 نمونه از مزارع بخش رباط نمکی شهرستان خرمآباد از قسمتهای ریشه، طوقه و ساقه گیاهان بهلیمو دارای علائم بیماری مانند پژمردگی و زردی جمعآوری شدند. نمونهها برای جداسازی و خالصسازی به آزمایشگاه، منتقل و در یخچال نگهداری شدند. پس از شستشوی بخشهای آلودة اندامهای گیاهی با جریان ملایم آب، با استفاده از اسکالپل سترون از حد واسط بافت آلوده و سالم برش داده شد و قطعات در محلول یک درصد هیپوکلریت سدیم[1] به مدت یک تا سه دقیقه ضدعفونی سطحی و سه مرتبه با آب مقطر سترون شستشو داده شدند. سپس سه تا چهار قطعه از هر نمونه به تشتک حاوی محیط کشت PDA برای جداسازی و رشد و تکثیر قارچ، منتقل و در دمای شناسایی مولکولی جدایههای قارچی: این بخش از پژوهش با هدف تأیید و تکمیل شناسایی ریختشناختی و با استفاده از روشهای تکثیر و توالییابی ناحیه ژنی TEF-1α انجام شد. استخراج DNA ژنومی قارچ با استفاده از روش ژانگ و استفنسون با اعمال اندکی تغییرات انجام گرفت و بدین منظور از توده میسلیومی پنج تا هفت روزه قارچ استفاده شد (18). آزمون PCR در حجم نهایی 25 میکرولیتر به کمک یک جفت آغازگر اختصاصی رفت و برگشت مربوط به ناحیه ژنی TEF-1α (19) و با استفاده از کیت بهمنظور ارزیابی کیفیت و کمیت، محصولات PCR روی ژل آگارز یک درصد بارگذاری و ارزیابی شدند. برای خالصسازی و تعیین ترادف نوکلئوتیدی، نمونهها به شرکت ماکروژن کره جنوبی (Macrogen, South Korea) ارسال شدند. سپس ترادفهای بهدستآمده در پایگاه NCBI با کمک ابزار بلاست با ترادفهای موجود مربوط به همین ناحیه ژنی مقایسه شدند. درخت فیلوژنتیکی این جدایهها به کمک نرمافزار بررسی تعاملات بیمارگر و بیوکنترل به روش کشت متقابل در شرایط آزمایشگاهی: قارچ بیوکنترل T. harzianum از کلکسیون قارچ آزمایشگاه بیماریشناسی دانشگاه لرستان به کد دسترسی OQ702632 بهصورت خالص، تهیه و روی محیط کشت PDA کشت شد. اثر بیوکنترل Trichoderma روی عامل بیماریزای Fusarium با استفاده از روش کشت متقابل همزمان دنیس و وبستر (22) در تشتکهای 9 سانتیمتری حاوی PDA در قالب طرح کامل تصادفی و در سه تکرار انجام گرفت. تشتکها روزانه بررسی شدند و با ثبت مشخصات ماکروسکوپی پرگنه قارچهای بیوکنترل و بیمارگر و اسپورزایی قارچ بیوکنترل روی پرگنه قارچ بیمارگر با مشاهدات میکروسکوپی، قدرت آنتاگونیستی جدایهها ارزیابی و مقایسه شد. در ادامه، دادهها تجزیه و تحلیل آماری شدند و درصد بازدارندگی از رشد میسلیوم قارچ با استفاده از رابطه (1) محاسبه شد (23). بررسی اثر متابولیتهای فرار قارچ Trichoderma بر رشد قارچ بیمارگر به روش ساندویچ در شرایط آزمایشگاهی: ارزیابی بازدارندگی از رشد قارچ بیوکنترل علیه قارچ بیمارگر بهوسیلة تولید متابولیتهای فرار با استفاده از روش دنیس و وبستر (22) در تشتکهای 9 سانتیمتری حاوی PDA در قالب طرح کاملاً تصادفی و در سه تکرار طراحی شد و بهصورت روزانه قطر پرگنه عامل بیماری و قارچ بیوکنترل اندازهگیری شد. درصد بازدارندگی از رشد میسلیوم قارچ بیمارگر بر اثر متابولیتهای فرار با استفاده از رابطه (2) به دست آمد. که در این فرمول IP نشان دهنده درصد بازدارندگی، C و T به ترتیب قطر پرگنهی بیمارگر در شاهد و تیمار است. بررسی اثر بازدارندگی جدایة Trichoderma بر بیماری پژمردگی فوزاریومی بهلیمو در شرایط گلخانه: بهمنظور مشاهدة اثر قارچ بیوکنترل برای تعیین وقوع بیماری و شدت بیماری در بوتههای آلوده از رابطه (3) و (4) استفاده میشود (28،27). DI = (درصد بیماری) (3) در این رابطه DI بیانکنندة میزان وقوع بیماری، DS (درصد شدت بیماری) = (4) A: تعداد بوتههای بدون علامت بیماری، B: تعداد بوتههای آلوده در مقیاس 1، C: تعداد بوتههای آلوده در مقیاس 2، D: تعداد بوتههای آلوده در مقیاس 3، تجزیه و تحلیل دادههای آماری: تمام آزمایشهای آزمایشگاهی و گلخانهای در قالب طرح کاملاً تصادفی اجرا شدند. تجزیه و تحلیل آماری توسط نرمافزار SAS ver 9.1 انجام شد و برای مقایسه میانگینها از آزمون Tukey (در سطح احتمال 5 درصد) و از نرمافزار Excel برای مرتبکردن دادهها و رسم نمودار استفاده شد. نتایج نتایج جداسازی و شناسایی جدایهها: درمجموع، 30 جدایة Fusarium از نمونههای جمعآوریشده جداسازی شدند. جدایهها پس از شناسایی براساس مشخصات مورفولوژیکی، در دو گونة F. oxysporum و F. redolens بهترتیب با فراوانی 7/56 و 3/43 قرار گرفتند (شکل 1) و از 7 جدایة مشکوک بررسیشده در مطالعات مولکولی، 4 جدایة شکل 1- الکتروفورز محصولات PCR به اندازه تقریبی 700 جفتباز از ناحیه ژن TEF در 7 جدایة Fusarium از بهلیمو (چاهک اول از سمت چپ مارکر مولکولی 100-3000bp مربوط به شرکت پیشگام، چاهکهای A-G: قطعات تکثیرشده مربوط به ناحیه ژنی TEF از نمونههای آلوده به Fusarium و چاهک آخر: شاهد منفی) Fig 1 – Electrophoresis of PCR products approximately 700 bp from the TEF gene region in seven Fusarium isolates from lemon verena (the first well from the left side of the 100-3000bp molecular marker belonging to Pishgam company, wells A-G: amplified fragments related to the TEF gene region from the samples Fusarium-infected plants and the last well: negative control) توالیهای ژن TEF جدایههای فوزاریوم برای رسم درخت فیلوژنی تجزیه و تحلیل شدند. در درخت رسمشده، جدایههای فوزاریوم به دو گروه کلی تقسیم شدند: گروه اول شامل جدایههای A، C، Dو G بهدستآمده در تحقیق حاضر و گونههای F.oxysporum سایر توالیهای موجود در بانک ژن بود و گروه دوم شامل جدایههای B، Eو F و نیز گونههای F.redolens دیگر توالیهای ثبتشده در بانک ژن بود. این توالیها از کشورهایی نظیر اسپانیا، آلمان، فنلاند، ایران و سایر کشورها از روی محصولات مختلف شامل کاهو، باقلا، اسطوخودوس، گندم و سایر محصولات، جداسازی و در پایگاه دادهای NCBI ثبت شده بودند؛ بنابراین، تجزیه و تحلیلهای فیلوژنتیکی قادر به تمایز گونههای فوزاریوم براساس ژن TEF بود. در رسم درخت از Trichoderma sp. بهعنوان گروه خارجی با خویشاوندی نزدیک استفاده شد (شکل 2). شکل 2- درخت تبارزایی رسمشده با استفاده از روش NJ (Neighbor-joining) با 1000 تکرار در ارزیابی در نرمافزار MEGA 11.0 براساس توالی نوکلئوتیدی ژن TEF-1α برای 7 جدایة Fusarium از بهلیمو (A-G). جدایهای از گونة Trichoderma sp. بهعنوان گروه خارجی در نظر گرفته شده است. Fig 2 – Genealogical tree drawn using NJ (Neighbor-joining) method with 1000 repetitions in evaluation in MEGA 11.0 software based on nucleotide sequence of TEF-1α gene for seven isolates of Fusarium from lemon verena نتایج آزمون اثبات بیماریزایی: بهمنظور انجام آزمون اثبات بیماریزایی در شرایط گلخانه، هر دو گونه به روش آغشتهسازی ریشة نهالها در سوسپانسیون اسپور بوتهها مایهزنی شدند. علائم بیماری 14 روز پس از مایهزنی در اندامهای هوایی نهالهای بهلیمو بهصورت زردی، پژمردگی و خشکی برگها همراه با تیرهشدن ساقه گیاه از نزدیک طوقه به سمت بالا ظاهر شد. چهار هفته پس از تلقیح، علائم بیماری در بافت آوندی ریشه و طوقه، پدیدار و بهصورت پوسیدگی قهوهای نمایان شد و برگهای اولیه خشک شدند و ریزش کردند و درنهایت، سبز خشکی و بوتهمیری عارض شد. پس از برآورد نمونههای گلخانهای، هر دو گونه بیماریزا بودند؛ اما گونة F. oxysporum بیشتر در ساقه و گونة F. redolens بیشتر روی ریشه ایجاد بیماری کرده بود و شدت بیماریزایی گونة F. redolens (78 درصد) نسبت به گونة F. oxysporum (55 درصد) بیشتر بود (شکل 3). شکل 3- شدت بیماریزایی چهار هفته پس از مایهزنی قارچهای (A F. redolens و (B F. oxysporum به نهالهای بهلیمو در گلخانه Fig 3 – Pathogenic severity four weeks after inoculation of fungi (A Fusarium redolens and B F. oxysporum) to lemon verbena seedlings in the greenhouse. بررسی تأثیر بیوکنترل بر بیمارگرها به روش کشت متقابل: در این پژوهش قارچ بیوکنترل شکل 4- تقابل ماکروسکوپی قارچ بیوکنترل T. harzianum و بیمارگرهای (A) F. oxysporum و (B) F. redolens در مقایسه با شاهد بیمارگر به روش Dual culture Fig 4 – Macroscopic comparison of the biocontrol fungus Trichoderma harzianum and pathogens (A) Fusarium oxysporum and (B) F. redolens compared to the pathogen control by Dual culture method.
شکل 5- مقایسه درصد بازدارندگی جدایة T. harzianum از رشد میسلیوم قارچهای F. oxysporum و F. redolens در کشت متقابل همزمان به روش Dual culture Fig 5 – Comparison of the inhibition percentage of Trichoderma harzianum isolates against the mycelium growth of Fusarium oxysporum and F. redolens in simultaneous mutual cultivation by dual culture method. بررسی اثر متابولیتهای فرار قارچ Trichoderma بر رشد بیمارگرها به روش ساندویچ: ازنظر ترکیبات فرار نیز نتایج مقایسههای میانگین نشان میدهند جدایة T. harzianum قادر به کاهش رشد قارچهای بیمارگر F. oxysporum و شکل 6- تأثیر بازدارندگی متابولیتهای فرار T. harzianum بر رشد بیمارگرهای F. oxysporum (ردیف A) و F. redolens (ردیف B) نسبت به شاهد بیمارگر به روش Exposure Fig 6 – The inhibitory effect of volatile metabolites of Trichoderma harzianum on the growth of pathogens Fusarium oxysporum (row A) and F. redolens (row B) compared to the pathogen control by exposure method.
شکل 7- مقایسه درصد بازدارندگی جدایة T. harzianum از رشد میسلیوم قارچهای F. oxysporum و F. redolens به روش Exposure Fig 7 – Comparison of inhibition percentage of Trichoderma harzianum isolate from the mycelium growth of Fsariumoxysporum and F. redolens by exposure method. نتایج مطالعات مهار زیستی در محیط گلخانه: در آزمایشهای گلخانهای با مایه تلقیح اسپور قارچهای عامل بیمارگر F. oxysporum و F. redolens در غلظت تعیینشده، نتایج نشان دادند حجم و ارتفاع ریشه و اندامهای هوایی تیمار T. harzianum نسبت به شاهد افزایش داشته است؛ بنابراین، افزایش فاکتورهای رشدی تیمارهای تلقیحشده با T. harzianum نسبت به بیمارگرهای F. oxysporum و F. redolens دیده شد. کاهش بیماری توسط جدایة T. harzianum در سطح شکل 8- مقایسه ریشه تیمارهای بررسیشده (A بهترتیب از چپ به راست شامل عامل بیوکنترل T. harzianum، شاهد سالم، عامل بیوکنترل بههمراه عامل بیمارگر F. oxysporum، شاهد آلوده F. oxysporum و (B بهترتیب از چپ به راست عامل بیوکنترل T. harzianum، شاهد سالم، Fig 8 – Comparison of the root of the investigated treatments: A) from left to right including biocontrol agent Trichoderma harzianum, healthy control, biocontrol agent along with pathogenic agent Fusarium oxysporum, infected control F. oxysporum and B) from left to right, biocontrol agent T. harzianum, healthy control, biocontrol agent with F. redolens pathogenic agent, F. redolens infected control.
بررسی تأثیر تیمارها بر ارتفاع، وزن تر و وزن خشک نهالهای بهلیمو: در این آزمایش، شکل 9- تأثیر تیمارها بر شاخصهای رشدی اندام هوایی و ریشه نهالهای بهلیمو 30 روز پس از کاشت در شرایط آلوده و غیرآلوده Fig 9 – The effect of treatments on growth indices of shoots and roots of lemon verbena seedlings 30 days after planting in infected and non-infected conditions. تأثیر عامل مهار زیستی بر شدت بیماری پژمردگی فوزاریومی بهلیمو: در این بررسی مشاهده شد قارچ بیوکنترل T. harzianum و قارچکش متیل تیوفانات[2] تأثیر بهسزایی بر شدت بیماری قارچهای بیمارگر F. oxysporum و F. redolens نشان دادند. مؤثرترین تیمار در کاهش شدت بیماری F.o+T M است. گیاه آلوده بر اثر این عامل شیمیایی بهطور میانگین، 25 درصد نشانهها را نشان داد. این تیمار باعث کاهش 5/64 درصدی شدت نشانهها شد؛ بنابراین، کنترل بیماری به روش استفاده از عامل شیمیایی تأثیرگذارتر از استفاده از عامل بیوکنترل بوده است. تیمارهای
شکل 10- تأثیر عوامل کنترل بیولوژیک بر شدت بیماری پژمردگی فوزاریومی بهلیمو 15 روز و 30 روز پس از کاشت Fig 10 –10- The effect of biological control agents on the severity of fusarium wilt disease in lemon verbena بحث و نتیجهگیری پس از نمونهبرداری گیاهان دارای علائم بیماری، جداسازی و خالصسازی قارچهای عامل بیماری، شناسایی 30 جدایه با خصوصیات مورفولوژیکی انجام و مشخص شد که 13 جدایه متعلق به F. oxysporum و 10 جدایه متعلق به F. redolens هستند و 7 جدایه مشکوک به گونة جدید و مجتمع ازنظر مولکولی بررسی شدند و در نهایت، 4 جدایه در گونة F. oxysporum و 3 جدایه در گونة F. redolens طبقه بندی شدند. در مطالعات کویکو و همکاران (30) نیز گونة جدایة T. harzianum برای اثبات فعالیت آنتاگونیستی در برابر بیمارگرهای F. oxysporum و در پژوهش حاضر مشخص شد اضافهکردن جدایة T. harzianum در شرایط گلخانه به خاک اطراف نهال، موجب افزایش شاخصهای رشدی (ارتفاع، وزن تر و وزن خشک اندام هوایی و ریشه) و نیز کاهش شدت بیماری و علائم زردی و پژمردگی در نهالهای بهلیمو آلوده به قارچ F. oxysporum و F. redolens میشود؛ اما تأثیر قارچکش متیل تیوفانات بهدلیل شیمیاییبودن بهمراتب بیشتر از جدایة Trichoderma بود. این موفقیت جدایة Trichoderma میتواند حاصل استقرار سریع این جدایه روی ریشه و خاک اطراف آن باشد که اجازة استقرار را به قارچهای بیمارگر نداده است و درنتیجه، موجب کاهش بیماری شدهاند. آزمون بیماریزایی در این تحقیق نشان داد قارچ بیوکنترل T. harzianum توانایی بازدارندگی از رشد هر دو بیمارگر را دارد؛ اما قارچ F. oxysporum در ایجاد بیماری نسبت به قارچ F. redolens از توسعه و شدت کمتری برخوردار است. نتایج نشان دادند دادهها اختلاف معنیداری در ارتفاع ساقه و طول ریشه، وزن تر و خشک ساقه و همچنین وزن تر و خشک ریشه در نهالهای بهلیمو نسبت به شاهد آلوده داشتند. با توجه به تحقیقات انجامشده، استفاده از عوامل مهار زیستی بهویژه گونههای Trichoderma در کنترل بیولوژیک بیماری پژمردگی فوزاریومی بسیار مؤثر است. در پژوهشی استفاده از دو جدایة آگاهی و شناخت کافی از عوامل تأثیرگذار در بهبود عملکرد عوامل زیستی تأثیر بهسزایی دارد. بهترین روش در کنترل بیماری پژمردگی فوزاریومی بهلیمو استفاده از سموم شیمیایی است؛ اما به دلایلی مانند افزایش مقاومت بیمارگر و حضور نژادهای جدید از بیمارگر، مقرونبهصرفه نبودن روش شیمیایی و باقیماندن سم در محیط زیست، استفاده از روش شیمیایی به تنهایی در کنترل بیماری مؤثر نیست. با استفاده از عوامل کنترل زیستی بهمنظور رفع کمبود و خطرات ناشی از سموم شیمیایی در طبیعت، برای مدیریت بیماری پژمردگی فوزاریومی بهلیمو میتوان اقدام کرد. نتایج نشان میدهند بیوکنترل قارچی T. harzianum پتانسیل رشد و جلوگیری از پیشرفت بیماری را در شرایط آزمایشگاهی و نیز در شرایط گلخانه افزایش میدهد. قارچ
[1] NaClO [2] Topsin M | ||
مراجع | ||
(1) Suna, SE, Incedayi Bİ, Tamer CE, Ozcan-Sinir GÜ, Copur ÖU. Lemon verbena (Lippia citriodora Kunth) beverages: Physicochemical properties, contents of total phenolics and minerals, and bioaccessibility of antioxidants. Italian Journal of Food science. 2019; 31: 40-57. https://doi.org/10.14674/IJFS-1161 (2) Filion, M, St-Arnaud M, Jabaji-Hare SH. Quantification of Fusarium solani f. sp. phaseoli in mycorrhizal bean plants and surrounding mycorrhizosphere soil using real-time polymerase chain reaction and direct isolations on selective media. Phytopathology. 2003 Feb; 93(2): 229-35. https://doi.org/10.1094/PHYTO.2003.93.2.229
(3) Booth, C. The Genus Fusarium. Common Wealth Mycological Institute. Kew, UK, Commonwealth Mycological Institute.; 1971. p. 237. https://www.cabdirect.org/ cabdirect/abstract/19721603830 (4) Gerlach, W. The present concept of Fusarium classification. In: P.E. Nelson, T.A. Toussoun and R.J. Cook. editor. Fusarium: Disease, Biology and Taxonomy. University Park, PA, USA, Pennsylvania State University Press; 1981: 413-426. (5) Lahlali, R, Ezrari S, Radouane N, Kenfaoui J, Esmaeel Q, El Hamss H, Belabess Z, Barka EA. Biological control of plant pathogens: A global perspective. Microorganisms. 2022 Mar 9;10(3):596. https://doi.org/10.3390/ microorganisms10030646 (6) Benitez, T, Rincón AM, Limón MC, Codon AC. Biocontrol mechanisms of Trichoderma strains. International microbiology. 2004 Dec;7(4):249-60. https://pubmed.ncbi.nlm. nih.gov/15666245/ (7) Kaewchai, S. Mycofungicides and fungal biofertilizers. Fungal Divers. 2009; 38:25-50. https://cir.nii.ac.jp/crid/1572261549925129216 (8) Howell, CR. Mechanisms employed by Trichoderma species in the biological control of plant diseases: the history and evolution of current concepts. Plant disease. 2003 Jan; 87(1):4-10. https://doi.org/10.1094/PDIS. 2003.87.1.4 (9) Cherif M, Benhamou N. Cytochemical aspects of chitin breakdown during the parasitic action of a Trichoderma sp. on Fusarium oxysporum f. sp. radicis-lycopersici. Phytopathology. 1990 Dec 1; 80(12):1406-14. https://www.apsnet.org/ publications/phytopathology/backissues/Documents/1990Articles/Phyto80n12_1406.pdf (10) Elad, Y, Chet I, Katan J. Trichoderma harzianum: A biocontrol agent effective against Sclerotium rolfsii and Rhizoctonia solani. Phytopathology. 1980 Jan 1; 70(2): 119-21. https://www.apsnet.org/ publications/phytopathology/backissues/Documents/1980Articles/Phyto70n02_119.PDF (11) Sivan, A, Ucko O, Chet I. Biological control of Fusarium crown rot of tomato by Trichoderma harzianum under field conditions. Plant Disease. 1987; 71(7): (12) Akrami, M, Ibrahimov AS, Zafari DM, Valizadeh E. Control Fusarium rot of bean by combination of by Trichoderma harzianum and Trichoderma asperellum in greenhouse condition. Agricultural Journal. 2009; 4(3): 121-3. https://www.cabidigitallibrary.org/ doi/full/10.5555/20093217809 (13) Barari, H. Biocontrol of tomato Fusarium wilt by Trichoderma species under invitro and in vivo conditions. Cercetări Agronomice în Moldova. 2016;49(1):91- 98. https://doi.org/10.1515/cerce-2016-0008 (14) Pratt, RG. Variation in occurrence of dematiaceous hyphomycetes on forage bermudagrass over years, sampling times, and locations. Phytopathology. 2005 Oct; 95(10):1183-90. https://doi.org/10.1094/ PHYTO-95-1183 (15) Leslie, JF, Summerell BA. The Fusarium laboratory manual. John Wiley & Sons; 2008 Feb 28. (16) Nelson, PE., Toussoun, TA., Marasas, WFO. An Illustrated Manual for Identification. Pennsylvania State University Press. University Park: Fusarium species. 1983: 157-168. (17) Crous, PW, Lombard L, Sandoval-Denis M, Seifert KA, Schroers HJ, Chaverri P, Gené J, Guarro J, Hirooka Y, Bensch K, Kema GH. Fusarium: more than a node or a foot-shaped basal cell. Studies in mycology. 2021 Mar 1; 98:100116. https://doi.org/10.1016/j.simyco. 2021.100116 (18) Zhong, S, Steffenson BJ. Virulence and molecular diversity in Cochliobolus sativus. Phytopathology. 2001 May; 91(5): 469-76. https://doi.org/10.1094/PHYTO.2001.91.5.469 (19) O'Donnell, K, Al-Hatmi AM, Aoki T, Brankovics B, Cano-Lira JF, Coleman JJ, De Hoog GS, Di Pietro A, Frandsen RJ, Geiser DM, Gibas CF. No to Neocosmospora: phylogenomic and practical reasons for continued inclusion of the Fusarium solani species complex in the genus Fusarium. Msphere. 2020 Oct 28; 5(5): 10-128. https://doi.org/10.1128/mSphere.00810-20 (20) Tamura, K, Stecher G, Peterson D, Filipski A, Kumar S. MEGA6: molecular evolutionary genetics analysis version 6.0. Molecular biology and evolution. 2013 Dec 1; 30(12): 2725-9. https://doi.org/10.1093/ molbev/mst197 (21) Shahbazi, S, Zaker Tavallaie F, Daroodi Z. Morphological and molecular identification of Fusarium spp. associated with carnation Dianthus caryophyllus in Mahallat, Iran. Journal of Crop Protection. 2021 Jun 10; 10(3): 461-71. https://doi.org/20.1001.1. 22519041.2021.10.3.7.5 (22) Dennis, C., Webster, J. Antagonistic properties of species groups of Trichoderma. II. Production of volatile antibiotics. Trans Brit Mycol Soc. 1971; 57:41-8. https://doi.org/10.1016/S0007-1536(71) 80078-5 (23) Mohammadi, S. Investigating the population structure and genetic diversity of Fusarium oxysporum f.sp. sesame, the causative agent of sesame yellowing and wilting disease in Fars province using vegetative compatibility groups and molecular methods. PhD [Dissertation]. Tehran: Islamic Azad University, Science and Research Unit; 2009. [In Persian]. (24) Mohammadi, N. Studies on pathogenecity and genetic diversity of some Iranian isolates Fusarium oxysporum f. sp lentis and determination of resistant lentil cultivars. M. SC. [Dissertation]. Tehran: University of Tarbiat Modares; 2010. [In Persian]. (25) Pastore-Corrales, MA, Abawi GS. Reactions of selected bean germ plasms to infection by Fusarium oxysporum f. sp. phaseoli. Plant disease. 1987; 71(11): 990-3. 10.1094/PD-71-0990 (26) Kari-Dolatabadi, H, Mohammadi Goltapeh E. In vivo biological activity of Piriformospora indica, Sebacina vermifera and Trichoderma spp. against Fusarium wilt of lentil. Plant Protection Journal. 2010; 2(2): 127-43. https://www.cabidigitallibrary.org/ doi/full/10.5555/20133113071 [In Persian]. (27) Ristaino, JB. Intraspecific variation among isolates of Phytophthora capsici from pepper and cucurbit fields in North Carolina. Phytopathology. 1990; 80(11): 1253-9. http://doi.org/10.1094/Phyto-80-1253 (28) Tomah, AA, Abd Alamer IS, Li B, Zhang JZ. A new species of Trichoderma and gliotoxin role: A new observation in enhancing biocontrol potential of T. virens against Phytophthora capsici on chili pepper. Biological Control. 2020 Jun 1; 145: 104261. https://doi.org/10.1016/j.biocontrol.2020.104261 (29) Cardoso, JE, Santos AA, Rossetti AG, Vidal JC. Relationship between incidence and severity of cashew gummosis in semiarid north‐eastern Brazil. Plant Pathology. 2004 Jun; 53(3): 363-7. https://doi.org/10.1111/ j.0032-0862.2004.01007.x (30) Koyku, ND, Özer N. Determination of seedborne fungi in onion and their transmission to onion sets. Phytoparasitica. 1997 Mar; 25: 25-31. https://doi.org/ 10.1007/BF02981476 (31) Jia, M, Ming QL, Zhang QY, Chen Y, Cheng N, Wu WW, Han T, Qin LP. Gibberella moniliformis AH13 with antitumor activity, an endophytic fungus strain producing triolein isolated from adlay (Coix lacryma-jobi: Poaceae). Current microbiology. 2014 Sep; 69: 381-7. https://doi.org/10.1007/s00284-014-0590-z (32) Sanchez Márquez, S., Bills, GF., Zabalgogeazcoa, I. The endophytic mycobiota of the grass Dactylis glomerata. Fungal Divers. 2007; 27: 171-195. http://www.fungaldiversity.org/fdp/sfdp/27_11 (33) Saremi, H. Ecology and Taxonomy of Fusarium Species. [Dissertation]. Holy War University of Mashhad; 1998. [In Persian]. (34) Khodaparast, AS., Hejaroude, GH. Fungal pathogens of tea in northern Iran. J. Plant Path. 1996; 32: 233-43. [In Persian]. (35) Barnet, HL., Hunter, BB. Illustrared Genera of Imperfect Fungi. 1988(4th ed). APS Press. (36) Faridi, F., Cavusi, MR. Identification and pathogenicity of Fusarium oxysporum species causing wilting of tall mazu seedlings chestnut- leaves oak (Quercus castaneifolia) in Golestan province. Journal of Wood and Forest Science and Technology. 2012; 19(3): 189-200. https://doi.org/20.1001.1. 23222077.1391.19.3.12.7 [In Persian]. (37) Ashrafi, SJ, Rastegar MF, Saremi H. Rosemary wilting disease and its management by soil solarization technique in Iran. African Journal of Biotechnology. 2010;9(42):7048-57. https://www.ajol.info/ index.php/ajb/article/view/130300 (38) Oji-ardebili, MM., Ahmadzadeh, M., Sharifi-tehrani, A., Javan-khah, M. Tree species of Fusarium isolated from rot and crown of rosmary medicinal plant in Semnan. Iranian Journal of Plant Pathology. 2008; 44: 68-69. (39) Ashrafizadeh, A., Etebarian, HR., Zamanizadeh, HR. Evaluation of Trichoderma isolates for biocontrol of Fusarium wilt of melon. Iranian Journal of Plant Pathology. 2005; 41: 39-57. https://www.cabidigitallibrary.org/doi/full/10.5555/20073009210 [In Persian]. (40) Etebarian, HR, Scott ES, Wicks TJ. Trichoderma harzianum T39 and T. virens DAR 74290 as potential biological control agents for Phytophthora erythroseptica. European Journal of Plant Pathology. 2000 May; 106: 329-37. https://doi.org/10.1023/ A:1008736727259 (41) Chavan, SC, Hegde YR, Prashanthi SK. Management of wilt of patchouli caused by Fusarium solani. Journal of Mycology and Plant Pathology. 2009; 39(1): 32-4. (42) Abbaszadeh, F., Mohammadi-goltape, A., Pourjam, A., Khorasani, A., Rezaei-danesh, Y., Verma, A. Investigating the antagonistic ability of root endophyte fungus and Trichoderma species on Macrophomina phaseolina fungus in laboratory conditions. Journal of Plant Disease Research. 2011; 1: (43) Vinale, F, D'Ambrosio G, Abadi K, Scala F, Marra R, Woo SL, Ciliento R, Lorito M. Application of Trichoderma harzianum (44) Niknejad-kazempour, M., Sharifi-tehrani, A., Akhovat, M. Investigating the effect of antagonistic fungi Trichoderma spp. against fusarium wilt disease of tomato caused by Fusarium oxysporum f. sp. lycopersici under greenhouse conditions. Iranian Journal of Agricultural Sciences. 1999; 31(1): 31-37. | ||
آمار تعداد مشاهده مقاله: 342 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 172 |