پیوندهای مفید
اخبار و اعلانات
آمار
| تعداد نشریات | 43 |
| تعداد شماره‌ها | 1,686 |
| تعداد مقالات | 13,853 |
| تعداد مشاهده مقاله | 32,877,898 |
| تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 12,997,127 |
کلونینگ و بیان ژن کدکننده آنزیم لاکاز از باکتری باسیلوس پومیلوس سویه GAZ23 | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
| زیست شناسی میکروبی | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
| مقاله 2، دوره 3، شماره 9، خرداد 1393، صفحه 1-10 اصل مقاله (309.76 K) | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
| نویسندگان | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
| پروین زمانی1؛ محمد علی آموزگار* 2؛ خسرو خواجه3 | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
| 1کارشناسی ارشد میکروبیولوژی، دانشگاه تهران، ایران | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
| 2دانشیار میکروبیولوژی، دانشگاه تهران، ایران | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
| 3استاد بیوشیمی، دانشگاه تربیت مدرس، ایران | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
| چکیده | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
| مقدمه: لاکازها (بنزن دیول اکسیژن اکسیدو ردوکتاز EC 1. 10. 3. 2 ) یکی از اعضا ی خانواده مالتی کوپر اکسیدازها هستند که اکسیداسیون طیف گسترده ای از ترکیبات فنولی را با استفاده از اکسیژن مولکولی کاتالیز میکنند. مواد و روش ها : ژن کدکننده آنزیم لاکاز از سویه GAZ23 بهوسیله پرایمرهای کلونینگ اختصاصی ژن تکثیرشد. محصول PCR در ناقل بیانی ( pET21a ) کلون به باکتری اشریشیاکلی سویه BL21(DE3) انتقال یافت و تحلیل توالی انجام شد. بیان آنزیم با استفاده از سوبسترای معمول لاکاز ABTS سنجیده شد. نتایج: توالی ژن S rDNA 16 سویه بومی GAZ23 که از خاکهای ایران جدا شده است دارای 100 درصد شباهت به باکتری باسیلوس پومیلوس بود. ژن لاکاز در سویه GAZ23 دارای 1533 نوکلئوتید است که 510 آمینواسید را کد می‌کند. بحث و نتیجه گیری: ژن لاکاز سویه GAZ23 دارای 67 درصد شباهت آمینواسیدی به پروتئین CotA باکتری باسیلوس سوبتیلیس است. به منظور به دست آوردن مقادیر بالای پروتئین محلول، بیان، تحت شرایط میکروآئروبیک و در دمای پایین انجام شد. 4 دمین غنی از هیستیدین متصل شونده به مس در توالی آمینواسیدی این پروتئین وجود دارد . | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
| کلیدواژه‌ها | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
| پروتئین CotA؛ لاکاز؛ باسیلوس پومیلوس؛ بیان ژن | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
| اصل مقاله | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
|
مقدمه لاکازها (بنزن‌دیول‌اکسیژن‌اکسیدو‌ردوکتاز EC1. 10. 3. 2)، آنزیمهای چند مسی از خانواده اکسیدازهای آبیاند. اکسیداسیون طیف گستردهای از ترکیبات فنولی را با استفاده از اکسیژن مولکولی به عنوان پذیرنده نهایی الکترون کاتالیز و آب را به عنوان تنها محصول جانبی تولید میکنند (1). این آنزیمها دارای 4 دمین غنی از هیستیدین هستند که به مس اتصال دارند. اتمهای مس کوئوردینه شده در پروتئینها در سه نوع T1، T2و T3 دسته بندی میشوند که از لحاظ خصوصیات اسپکتروسکوپی متفاوتاند. مس نوع یک (T1) مرکز تک هستهای را تشکیل میدهد و در اکسیداسیون سوبسترا نقش دارد در حالی که مس T2 با یک اتم مس به همراه مس T3 با دو اتم مس، مرکز سه هستهای را تشکیل میدهند و با انتقال الکترون‌ها به اکسیژن باعث تشکیل آب میشوند (2). این آنزیمها در گیاهان، قارچها و در بعضی از باکتری‌ها و حشرات یافت میشوند (3). در گیاهان این آنزیمها در بیوسنتز لیگنین شرکت میکنند (4) و در قارچها در تجزیه لیگنین، تشکیل پیگمان، سم زدایی و بیماریزایی گیاهان دخالت دارند (5). با توجه به این که لاکازها سوبستراهای زیادی دارند و واکنشهای شیمیایی مختلفی مانند تخریب پلیمرها، تشکیل مونومرها، شکستن ترکیبات حلقوی و اکسیداسیون ترکیبات آروماتیک را کاتالیز میکنند،کاربردهای زیادی در صنایع بیوتکنولوژیکی دارند (6). به عنوان مثال در صنایع کاغذسازی و صنایع نساجی برای سم زدایی و حذف رنگ از فاضلابها به کار میروند (6 و 7). لاکازها همچنین در صنایع غذایی برای پایدارسازی و بهینهسازی کیفیت نوشیدنی‌های مختلف و اکسیژن زدایی محصولات فاسد شدنی حاوی روغن‌‌های گیاهی کاربرد دارند (8 و 9). اولین لاکازهای پروکاریوتی گزارش شده مربوط به باکتری آزواسپریلوم لیپوفروم[1] است. این آنزیم تولید پیگمان و مصرف ترکیبات فنولی گیاه و انتقال الکترون‌ها را بر عهده دارد (10). مهمترین لاکاز باکتریایی که تا کنون به خوبی بررسی شده و خصوصیات فیزیکی و بیوشیمیایی آن تعیین شده پروتئین CotA باکتری باسیلوس سوبتیلیس[2] است. CotA پروتئین kDa65 به پوشش خارجی اسپور متعلق است. این پروتئین در بیوسنتز پیگمان قهوه‌ای اسپور که یک محصول شبه ملانین است، شرکت می‌کند و به نظر می‌رسد که مسئول محافظت در برابر نور UV و پراکسید هیدروژن باشد. این پروتئین شباهت‌هایی را با اکسیدازهای چند مسی نشان میدهد و پایداری دمایی بالایی دارد (11). لاکازهای دیگری از سویههای اشریشیا کلی[3](12)، باسیلوس هالودورانس[4](13) و باسیلوس لیکنیفورمیس[5](14)، جدا شده است. اکثر لاکاز‌هایی که تا کنون شناسایی شده و دارای کاربردهای بیوتکنولوژیکی هستند از قارچها جداشدهاند (15). با این حال بیان کارا و مؤثر لاکازهای نوترکیب قارچی، که بیشتر برای کاربردهای بیوتکنولوژیکی ضروری است، نسبت به بیان آنزیمهای باکتریایی سختتر است. از مشکلات و موانع استفاده از این دسته از آنزیمها میتوان به اطلاعات توالیهایی که دستیابی به آنها امکان پذیر نیست، وجود ساختار اگزون و اینترون در ژنهای یوکاریوتی، تغییرات پس از ترجمه، تشکیل پلهای دیسولفیدی، زمان تخمیر طولانی و بازده کم آنها اشاره کرد. با وجود کاربردهای صنعتی باکتری‌ها، تا کنون توجه کمی به لاکازهای باکتریایی شده است. بررسیهای انجام شده در تجزیه و تحلیل ژنوم مشخص کرده که این آنزیمها در باکتری‌ها به طور گستردهای توزیع شدهاند (16). توسعه لاکازهای باکتریایی برای کاربردهای بیوتکنولوژیکی دارای مزایایی است زیرا پایداری دمایی بالایی دارند و در مدت زمان کوتاهی در محیط‌های ارزان تولید میشوند. هدف این پژوهش، جداسازی و بیان ژن کد کننده آنزیم لاکاز از سویه GAZ23است که شباهت زیادی به پروتئین CotA سویه باسیلوس سوبتیلیس-که یک پروتئین مقاوم به دما است- دارد.
مواد و روشها مواد ایزوپروپیلβ-D-1- تیوگالاکتوپیرانوزید IPTG)[6])، آنزیمهای محدود کننده XhoI و NdeI از شرکت فرمنتاز[7] (آلمان) و [8]ABTS از شرکت سیگما-آلدریچ[9] (آمریکا) و سایر مواد از شرکت مرک[10] (آلمان) خریداری شد. سویهها و محیط کشت سویه بومی GAZ23 از خاکهای کشاورزی منطقه فیروز کوه در ایران جدا شده است. باکتری اشریشیلاکلی سویهXL1-Blue به عنوان میزبان کلونینگ و باکتری اشریشیلا کلی سویه بر اساس آزمونهای میکروسکوپی و فیزیولوژیک، شناسایی اولیه سویه انجام شد (17). رنگ آمیزی گرم بر اساس روش هوکر[11] انجام شد، و شکل میکروسکوپی سویه توسط میکروسکوپ نوری و عدسی چشمی 100 مشاهده شد. برای بررسی فعالیت کاتالازی از کشت 24 ساعته سویه و پراکسید هیدروژن 3 درصد به عنوان معرف استفاده و تولید حباب به عنوان واکنش مثبت در نظر گرفته شد. برای مشاهده اسپور باکتری از محیط اسپورزایی آگاردار استفاده شد، به علاوه برای تأمین رشد و کاهش میزان آلودگی، کلرید سدیم به میزان 3 درصد به حجم محیط اضافه شد (18). ابتدا باکتری در محیط تولید اسپور کشت داده، و پس از 4 روز، رنگ آمیزی اندوسپورها با رنگ فوشین بازی بر اساس روش شافر و فلتون[12] انجام شد (17). شناسایی تکمیلی سویه منتخب با تکثیر و تعیین توالی ژن S rDNA16 انجام شد. برای این منظورDNA ژنومی سویه GAZ23 استخراج شد (19) و به عنوان الگو برای انجام واکنش زنجیرهای پلیمراز با استفاده از پرایمرهای جهانی 27F: agagtttgatcmtggctca و 1492R: GGTTACCTTGTTACGACTT استفاده شد (20). تکثیر ژن S rDNA16 با استفاده از واکنش زنجیرهای پلیمراز، بافر با غلظت X1 در ترکیب نهایی، MgCl2 با غلظت نهایی 5/2 تا 5/0 میلیمول، dNTP با غلظت 4/0 میلیمول، آنزیم Taq DNA پلیمراز به میزان 50U/2 میکرولیتر و پرایمرهای رفت و برگشت از هر کدام به میزان 5/0 تا 4/0 میلیمول و DNA الگو به میزان مناسب استفاده شد. در انجام واکنش زنجیرهای پلیمراز از نمونه با شرایط مشابه با سایر نمونهها که در آن به جای DNA الگو از آب مقطر استفاده شده بود، به عنوان شاهد منفی استفاده شد. واکنش واسرشت سازی اولیه با دمای 95 درجه سانتیگراد به مدت 5 دقیقه و 30 چرخه تکرار شونده شامل: واسرشت سازی با دمای 94 درجه سانتیگراد به مدت یک دقیقه، اتصال پرایمرها در 57 درجه سانتیگراد به مدت یک دقیقه، گسترش در 72 درجه سانتیگراد به مدت یک دقیقه و پس از اتمام 30 چرخه برای گسترش نهایی در 72 درجه سانتیگراد به مدت 7 دقیقه انجام شد. محصول نهایی حاصل از واکنش تعیین توالی شد (شرکت ماکروژن کره جنوبی)[13]. کلونینگ ژن مورد نظر با توجه به اینکه مهمترین آنزیم لاکازی که تا کنون شناسایی و ویژگیهای بیوشیمیایی و خصوصیات ساختاری آن به خوبی تعیین شده است به پروتئین CotA اسپور باکتری باسیلوس سوبتیلیس مربوط است، توالی آمینواسیدی و نوکلئوتیدی CotA باکتریباسیلوس سوبتیلیسبا کد دسترسی NP_388511 به عنوان الگوی جستجو در بانک اطلاعات ژنی[14] استفاده شد تا لاکازهای باکتریایی شناسایی نشده از این طریق شناسایی شوند. واکنش زنجیرهای پلیمراز برای ژن مورد نظر با استفاده از پرایمر رفت با توالی: 5ˊATACATATGAACCTA GAAAAATTTGTTGACG 3ˊ
دارای جایگاه برش آنزیم NdeI در طرف ˊ5 و پرایمر برگشت با توالی: 5ˊGTGCTCGAGTTACTGG ATGATATCCATCGGCC 3ˊ
دارای جایگاه برش آنزیم XhoI در طرف ˊ5 انجام شد. DNA ژنومی استخراج شده از سویه GAZ23 به عنوان الگو استفاده شد. ژن مورد نظر با استفاده از پرایمرهای طراحی شده با واکنش زنجیرهای پلیمراز تکثیر شد. تکثیر ژن مورد نظر با واکنش زنجیرهای پلیمراز بافر با غلظت x1 در ترکیب نهایی، MgCl2 با غلظت نهایی 5/2 میلیمول، dNTP با غلظت 4/0 میلیمول از هر کدام، آنزیم Taq DNA پلیمراز 50U/2 میکرولیتر و پرایمرهای رفت و برگشت از هر کدام 8/0 تا 1 میلیمول و DNA الگو به میزان مناسب استفاده شد. در انجام واکنش زنجیرهای پلیمراز از نمونه با شرایط مشابه با سایر نمونهها که در آن به جای DNA الگو از آب مقطر تزریقی استفاده شده بود، به عنوان شاهد منفی استفاده شد. برای انجام واکنش زنجیرهای پلیمراز از واسرشت سازی اولیه با دمای 95 درجه سانتیگراد به مدت 5 دقیقه و 30 چرخه تکرار شونده شامل: واسرشت سازی با دمای 94 درجه سانتیگراد، اتصال با دمای بین 55 تا60 درجه سانتیگراد هر کدام به مدت 60 ثانیه و سنتز با دمای 72 درجه سانتیگراد به مدت 60 ثانیه و پس از اتمام 30 چرخه برای سنتز نهایی دمای 72 درجه سانتیگراد برای مدت 15 دقیقه در نظر گرفته شد. محصول واکنش زنجیرهای پلیمراز با کیت خالص سازی محصول PCR (Bioneer) خالص شد. محصول PCR خالص شده و پلاسمید بیانی pET21a(+) توسط آنزیمهای محدود کننده NdeI و XhoI به شکل جداگانه هضم آنزیمی شدند. محصولات هضم شده توسط کیت خالص سازی محصول PCR (Bioneer) خالص شد و سپس قطعات ژنی و پلاسمید هضم شده با غلظتهای مناسب توسط آنزیم لیگاز به هم اتصال یافتند. باکتری اشریشیاکلی سویهXL1-Blue به عنوان میزبان کلونینگ استفاده شد. پلاسمید حاصل از اتصال قطعات وکتور بیانی و ژن در سویه XL1-Blue ترانسفورم شد و سپس، بر روی محیط LB جامد دارای آمپی‌سیلین کشت داده شدند. کلونیهای مثبت دارای پلاسمید نوترکیب انتخاب و صحت حضور پلاسمید مورد نظر در این سویه با روش هضم دوگانه با آنزیمهای محدود کننده و روش کلونی PCR تایید شد. پلاسمید نوترکیب pET21a از این سویه با استفاده از کیت استخراج پلاسمید، استخراج و برای اطمینان از صحت توالی مورد نظر با استفاده از پرایمرهای T7 promoter وT7 terminator تعیین توالی شد. بیان ژن پس از اطمینان از صحت توالی مورد نظر، پلاسمید نوترکیب pET21a در باکتری اشریشیاکلی سویه BL21(DE3) ترانسفورم و سپس بر روی محیط LB دارای آمپی‌سیلین کشت داده شد. یکی از کلونیهای BL21 مثبت دارای پلاسمید نوترکیب pET21a که بر روی محیط LB جامد دارای آمپی‌سیلین رشد کرده بود به محیط LB حاوی آمپی‌سیلین به عنوان پیش کشت تلقیح شد و در شیکر انکوباتور با دمای 37 درجه سانتیگراد با دور 220 rpm به مدت 12 ساعت گرماگذاری شد. پس از این زمان، از محیط پیش کشت به محیط TB حاوی آمپی‌سیلین تلقیح و در دمای 30 درجه سانتیگراد با شیک 180 دور در دقیقه قرار داده شد تا به از آنجایی که پروتئینهای بیان شده در داخل سلول مجتمع میشوند، سلولها پس از 20 ساعت گرماگذاری، با سانتریفیوژ در g4000 به مدت 20 دقیقه در دمای 4 درجه سانتیگراد جمعآوری شدند. رسوب به دست آمده در بافر فسفات 50 میلیمولار با اسیدیته6/7 حاوی مهار کننده پروتئاز PMSF[15] یک میلیمولار حل و سپس، بر روی یخ سونیکیت شد. بقایای سلولهای شکسته شده با سانتریفیوژ با دور 13000 به مدت 15 دقیقه در دمای 4 درجه سانتیگراد رسوب داده شدند. محلول رویی در 70 درجه سانتیگراد به مدت 15 دقیقه گرما گذاری و سپس، برای حذف پروتئینهای دناتوره شده در سنجش بیان آنزیمی فعالیت آنزیمی در دمای اتاق در حضور سوبسترای معمول این آنزیم ABTS سنجیده شد. اکسیداسیون (ABTS) 2 میلیمولار در بافر فسفات 100 میلیمولار با اسیدیته 4 توسط افزایش جذب در طول موج 420 نانومتر به مدت 5 دقیقه اندازه گیری شد. نتایج جستجوی پروتئینی برای لاکازهای باکتریایی شناسایی نشده با استفاده از توالی نوکلئوتیدی و آمینواسیدی پروتئین Cot A باکتری باسیلوس سوبتیلیس به عنوان الگو انجام شد. همولوگهای متعددی از این پروتئین در توالی کامل ژنوم باکتری باسیلوس پومیلوس شناسایی شد. در نتیجه ژن cotA باکتری باسیلوس پومیلوس برای کلونینگ و بیان ژن cotA در باکتری اشریشیاکلی انتخاب شد. شناسایی سویه نتایج بررسی صفات اولیه در سویه GAZ23 نشان داد که این سویه، سویهای گرم مثبت، دارای اندوسپور و
شکل 1- درخت فیلوژنتیک سویهGAZ23 با روش Neighbor-joining و با استفاده از معیار Boot strap 1000
تکثیر اختصاصی ژن لاکاز ژن لاکاز در سویه GAZ23 با استفاده از پرایمرهای طراحی شده اختصاصی ژن تکثیر شد. شکل 2 تصویر ژل محصول PCR ژن مورد نظر را نشان میدهد.
شکل 2- تصویر ژل محصول PCR. 1 باند ژن مورد نظر سویه GAZ23 با پرایمرهای دارای جایگاه برش. M) شاخص وزنی (فرمنتاز SM0331)
پس از تایید کلون شدن ژن مورد نظر در وکتور pET21a(+)، پلاسمیدهای نوترکیب تخلیص شد و با استفاده از پرایمرهای T7 promoter و T7 terminator تعیین توالی شد. نتیجه تعیین توالی ژن بررسی شد. توالی نوکلئوتیدی در پروتال منابع بیوانفورماتیک[18] به توالی آمینواسیدی تبدیل شد و مشخص شد توالی بدون جهش بود. بیان آنزیم لاکاز فعالیت آنزیمی لاکاز در دمای اتاق در حضور سوبسترای معمول این آنزیم ABTS انجام شد. سنجش فعالیت آنزیمی شامل: اکسیداسیون (ABTS) 2 میلیمولار در بافر فسفات 100 میلیمولار با اسیدیته 4 با افزایش جذب در 420 نانومتر انجام شد (ε=36000M-1cm-1).
شکل 3- الف) افزایش جذب در اثر اکسیداسیون ABTS در طول موج 420 نانومتر، پس از زمان 5 دقیقه میزان جذب به 9/0 رسید. نمونه شاهد 1/0 افزایش جذب به علت شکستن خودبه خودی ABTS نشان میدهد. ب) ایجاد رنگ سبز در اثر اکسیداسیون ABTS با آنزیم لاکاز برای نمونه مثبت. ج) نمونه کنترل که عدم تغییر رنگ را نشان میدهد.
بحث و نتیجهگیری بیان ژن لاکاز تحت شرایط معمول یعنی کشت سلول تحت شرایط هوازی جواب مطلوبی در بر نداشت. همان‌طور که قبلاً گزارش شده است تحت شرایط هوازی تنها بخش کمی از آنزیم بیان شده به شکل فعال باقی می‌ماند و بیشتر محصول بیان به شکل جسم تودهای[19] است که این اتفاق ممکن است به علت جایگزینی ناقص یون مس در ساختار آنزیم باشد (24). همان‌طور که دورائو[20] و همکاران به این نکته اشاره کردند که محتوای مس CotA وابسته به غنی سازی محیط کشت با یون مس و وجود اکسیژن در محیط کشت است (25). تغییر شرایط آئروبیک به میکروآئروبیک محتوای داخل سلولی مس را افزایش میدهد. افزایش یون مس داخل سلولی و همچنین، وجود شرایط میکروآئروبیک به ایجاد وضعیتی مناسب برای تاخوردگی و تشکیل هولوآنزیم منجر میشود. توالی آمینواسیدی CotA، سویه GAZ23 که دارای 510 آمینواسید است با توالی آمینواسیدی پروتئین CotA باکتری باسیلوس سوبتیلیس که دارای 513 آمینواسید است در NCBI Blast بررسی شد. توالی آمینواسیدی CotA، سویه GAZ23، 79 درصد شباهت[21]و 68 درصد همسانی[22] ا به توالی آمینو اسیدی باکتری باسیلوس سوبتیلیسدارد. لیگاندهای متصل شونده به مس T1 در باکتری باسیلوس سوبتیلیس یعنی M502، H419، H497، C492 و در مس T2 یعنی: H105، H422 و در مس T3 یعنی: H107، H153، H155، H424، H491، H493 در توالی آمینواسیدی CotA، سویه GAZ23 کاملاً حفاظت شده است. ریشه اسید آمینه سیستئین C229 و C322 که فرض شده، در تشکیل باندهای دی سولفیدی در پروتئین CotA باکتری باسیلوس سوبتیلیس نقش دارند. همچنین، در توالی CotA، سویه GAZ23 حفظ شده است. ژن مورد نظر در سویه GAZ23 همانند سایر لاکازهای قارچی و باکتریایی که تاکنون شناسایی شده، دارای 4 ناحیه متصل شونده به مس غنی از هیستیدین است و شباهت زیادی به پروتئینهای متصل شونده به مس دارد (15).
جدول 1- هم تراز سازی 4 دمین متصل شونده به مس در توالی آمینواسیدی لاکاز برخی سویههای باسیلوسی و سویههای قارچی و مقایسه آنها با توالی آمینواسیدی لاکاز سویهGAZ23. ریشههای آمینواسیدی حفاظت شده و متصل شونده یون‌های مس نوع 1، 2 و 3 با سایه نشان داده شده است.
Pr: Phlebia radiate, Tv: Trametes versicolor, Cc: Coprinus cinereus, Po: Pleurotus ostreatus, Tvi: Trametes villosa Bs: B. Subtilis, Bh: B. Halodurans, GAZ23, Blich: B. Licheniformis
از مهمترین ویژگیهای CotA پایداری دمایی این پروتئین است، لاکازهای قارچی بیشتر در دماهای پایین فعال هستند (23). در نتیجه پایداری دمایی CotA مزیتی برای کاربردهای بیوتکنولوژیکی است. اگرچه بیان آنزیم با افزودن مس به محیط کشت، کاهش دما و ایجاد شرایط میکروآئروبیک، نسبت به شرایط هوازی افزایش مییافت، اما تنها بخش کمی از آنزیم بیان شده به شکل فعال بود. بهینه سازی شرایط بیان برای تولید آنزیمی با فعالیت بیشتر، بررسی فعالیت و پایداری آنزیم در شرایط مختلف دما و اسیدیته، تعیین ویژگیهای بیوشیمیایی مانند تعیین وزن مولکولی دقیق پروتئین و تعیین ساختار آنزیمی برای ادامه کار پیشنهاد میشود.
[1]. Azospirillum lipoferum [2]. Bacillus subtilis [3]. E. coli [4]. B. halodurans [5]. B. licheniformis [6]. Isopropyl β-D-1-thiogalactopyranoside [7]. Fermentase [8]. 2,2ˊ-azino-bis(3-ethylbenzothioazolin-6-sulphonic acid [9]. Sigma-Aldrich [10]. Merck [11] Hucker [12] Schaeffer-fulton [13] Macrogen korea [14]. http://blast. ncbi. nlm. nihi. gov [15]. Phenyl methanesul fonyl fluoride or phenyl methyl sulfonyl fluoride [16]. http://eztaxon-e. ezbiocloud. net/ [17] MEGA5 [18] www.expasy.ch [19]. Inclosion body [20] Durao [21]. similarity [22]. Identity | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
| مراجع | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
|
References (1) Thurston CF. The structure and function of fungal laccases. Microbiol1994; 140 (1): 19–26. (2) Messerschmidt A, Huber R. The blue oxidases, ascorbate oxidase, laccase and ceruloplasmin-modeling and structural relationships. Eur J Biochem 1990; 187(2): 341–52. (3) Claus H. laccases and their occurrence in prokaryotes. Arch. Microbiol 2003; 179(3): 145-50. (4) Omalley DM, Whetten R, Bao WL, Chen CL, Sederoff RR. The role of laccase in lignification. Plant 1993; 4(5): 751–57. (5) Geiger JP, Nicole M, Nandris D, Rio B. Root-rot diseases of Hevea brasiliensis,1. Physiological and biochemical aspects of host aggression. Eur J Forest Pathol 1986; 16(1): 22–37 (6) Mayer AM, Staples RC. Laccase: new functions for an old enzyme. Phytochemistry 2002; 60: 551–65 (7) Yaropolov A. I, Skorobogat'ko O. V, Vartanov S. S, Varfolomeyev M. W. Laccase properties, catalytic mechanism, and applicability. Biotechnol 1994; 49(3): 257-80. (8) Minussi RC, Pastore GM, Durán N. Potential applications of laccase in the food industry. Trends Food Sci Technol 2002; 13(6-7): 205–16. (9) Selinheimo E, Kruus K, Buchert J, Hopia A, Autio K. Effects of laccase, xylanase and their combination on the rheological properties of wheat doughs. JCereal Sci 2006; 43(2): 152–59. (10) Givaudan A, Effosse A, Faure D, Potier P, Bouillant ML, Bally R. Polyphenoloxidase in Azospirillum lipoferum isolated from rice rhizosphere : evidence for laccase activity in nonmotile strains of Azospirillum lipoferum. FEMS Microbiol Lett 1993; 108(2): 205-10 (11) Driks A. The Bacillus subtilis spore coat. Phytopathology 2004; 94(11): 1249–51. (12) Brown NL, Barrett SR, Camakaris J, Lee BT, Rouch DA. Molecular gene and transport analysis of the copper resistabcse determinant (pco) from Escherichia coli plasmid pRJ 1004. Mol Microbiol 1995, 17(6):1153-66. (13) H. J. Ruijssenaars. S. Hartmans. A cloned Bacillus halodurans multicopper oxidase exhibiting alkaline laccase activity. Appl Microbiol Biotechnol 2004; 65(2): 177–82. (14) Renate Reiss, Julian Ihssen, Linda Thöny-Meyer. Bacillus pumilus laccase: a heat stable enzyme with a wide substrate spectrum. BMC Biotechnology 2011; 11(1): 9. (15) Feng Xu, Damhus T, Danielsen S, Ostergaard LH. Modern biooxidation: Enzyme, Reaction and Apllication. Edited by Rolf D. Schmid, Valada B. urlacher. Weinheim: Wiley; 2007.
(16) Sharma P, Goel R, Capalash N. Bacterial laccases. World J Microbiol Biotechnol 2007. 23: 823–32. (17) Gerhardt P, Murray R. G. E. Methods for general and molecular bacteriology. 3rd Edition. Washington. D. C: American Society for Microbiology; 1994. (18) Atlas R. M, Bartha R. Microbial Ecology: Fundamentals and Applications. 4th Edition. Addison: Wesley; 1998. (19) Wilson K. Preparation of genomic DNA from bacteria. In Current Protocols in Molecular Biology, B. R. Ausubel FM, Kingston RE, Moore DD, Seidman JG, Smith JA, Struhl K, editor. New York: John Wiley & Sons; 1987. (20) Spencer J. Environmental microbiology: methods and protocols. US: Humana Press Inc; 2004. (21) Saitou N, Nei, M. The neighbor-joiningmethod: a new method for reconstructing phylogenetic trees. Molecular Biology Evolution 1987; 4: 406-25. (22) Felsenstein J. Confidence limits on phylogenies: an approach using the bootstrap. Evolution 1985, 39(4): 783-91. (23) Kumar S, Stecher G, Peterson D, and Tamura K. MEGA-CC: Computing Core of Molecular Evolutionary Genetics Analysis Program for Automated and Iterative Data Analysis. Bioinformatics 2012; 28:2685-86. (24) Koschorreck K, Richter SM, Ene AB, Roduner E, Schmid RD, Urlacher VB. Cloning and characterization of a new laccase from Bacillus licheniformis catalyzing dimerization of phenolic acids. Appl Microbiol Biotechnol 2008; 79(2):217-24. Durao P, Chen Z, Fernandes AT, Hildebrandt P, Murgida DH, Todorovic S, et al. Copper incorporation into recombinant CotAlaccase from Bacillus subtilis: characterization of fully copper loaded enzymes. J BiolInorg Chem 2008; 13(2):183– | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
|
آمار تعداد مشاهده مقاله: 2,750 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 868 |
|||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||